--

13 (1) 2018

Đánh giá khả năng đối kháng của các chủng Trichoderma spp. và Bacillus subtilis đối với chủng Pythium vexans gây bệnh chết nhanh trên hồ tiêu


Tác giả - Nơi làm việc:
Nguyễn Thị Ánh Nguyệt - Trung tâm Công nghệ Sinh học Thành phố Hồ Chí Minh , Việt Nam
Lê Thị Mai Châm - Trung tâm Công nghệ Sinh học Thành phố Hồ Chí Minh , Việt Nam
Trần Thùy Trang - Trung tâm Công nghệ Sinh học Thành phố Hồ Chí Minh , Việt Nam
Dương Hoa Xô - Trung tâm Công nghệ Sinh học Thành phố Hồ Chí Minh , Việt Nam
Tác giả liên hệ, Email: Dương Hoa Xô - anhnguyet07s2@gmail.com

Tóm tắt
Pythium spp. được biết đến là một trong những tác nhân chính gây bệnh chết nhanh dẫn đến thiệt hại nặng nề về năng suất cây hồ tiêu (Shashidhara, 2007). Có nhiều biện pháp đã được áp dụng để phòng trừ bệnh chết nhanh trên hồ tiêu như hóa học, sinh học… Tuy nhiên, việc sử dụng thuốc hóa học thường cho hiệu quả thấp, độc hại và gây ô nhiễm môi trường nên biện pháp sinh học đang được chú trọng nhờ hiệu quả lâu dài và thân thiện với môi trường. Trong đó, Trichoderma spp. và Bacillus spp. từ lâu đã được chứng minh có khả năng đối kháng tốt với nấm Pythium spp. nhờ tiết một số loại enzyme ngoại bào như glucanase, chitinase, cellulose… (Anita Patil và cộng sự 2012; Amrita và cộng sự, 2016; Najwa Benfradj và cộng sự, 2016). Nghiên cứu này cho thấy rằng, trong điều kiện in vitro, ở nồng độ 106 bào tử động/ml, chủng Pythium vexans P6 có khả năng gây bệnh thối nhanh rễ tiêu với chỉ số gây hại và tỉ lệ hại cao nhất trong 11 chủng Pythium vexans. Ngoài ra, các kết quả thu được đã chứng minh 12 chủng Trichoderma spp. và 5 chủng Bacillus subtilis có khả năng đối kháng với chủng Pythium vexans P6 trong phòng thí nghiệm. Sau 6 ngày đồng nuôi cấy, phần trăm ức chế nấm bệnh của các chủng Trichoderma spp. đạt từ 40-90%. Sau 8 ngày, hầu hết khuẩn lạc các chủng Trichoderma spp. đã ức chế hoàn toàn nấm bệnh. Bên cạnh đó, cả 5 chủng Bacillus subtilis đều có khả năng đối kháng với chủng nấm bệnh Pythium vexans P6. Tuy nhiên, tỷ lệ ức chế nấm bệnh của các chủng Bacillus subtilis chỉ đạt từ 22,69-27,67% sau 6 ngày đồng nuôi cấy, thấp hơn so với các chủng Trichoderma spp..

Từ khóa
Bacillus subtilis;bệnh chết nhanh trên tiêu;Pythium vexans;Trichodermaspp

Toàn văn:
PDF

Tài liệu tham khảo

Akira, M., Juan, D. D. M. F., Jose, L. G., & Tsuneo, W. (1998). Root rots of black pepper cause by Pythium splendens in the Dominican Republic. Annals Phytophathological Society of Japan, 64(4), 303-306.


Amrita, S., Richa, R., Vijai, K. G., & Harikesh, B. S. (2016). Chilli Anthracnose: The epidemiology and management. Frontiers in Microbiology, 7, Article 1527. doi:10.3389/fmicb.2016.01527.


Anita, P., Aarti, L., Ashwin, L., Hariprasad, P., & Shubhada, M. (2012). In vitro antagonistic properties of selected Trichoderma species against tomato root rot causing Pythium species. International Journal of Science, Environment and Technology, 4(1), 302-315.


Approaches, T., Phenetics, N., Analyses, P., Metabolism, C., Repression, C., & Metabolism, N. (2001). Biotechnology set (2nd ed.). Hoboken, NJ: Wiley.


Bộ NN và PTNT. (2014). Quy chuẩn kỹ thuật quốc gia về phương pháp điều tra phát hiện sinh vật gây hại cây hồ tiêu, QCVN 01 - 172 (Thông tư 16) [National technical regulation on methods of investigating and detecting harmful organisms of pepper plants, QCVN 01 - 172 (Circular 16)]. Retrieved May 1, 2018, from https://www.ppd.gov.vn/uploads/news/2014_06/172.pdf


Christy, J. E., Tharmila, S., & Niranjan, K. (2012). Antagonistic activity of Trichoderma spp. and Bacillus spp. against Pythiumaphanidermatum isolated from tomato damping off. Archives of Applied Science Research, 4(4), 1623-1627.


Iuliana, R., Oancea, F., Belén, A., Trinidad, L. S., Calin, M., Aruxandei, D. C., … Jecu, L. (2017). Evaluation of Trichoderma spp. as a biocontrol agent against Phytophthora parasitica. Scientific Bulletin Series F. Biotechnologies, 2017(21), 2285-1364.


Izumitsu, K., Hatoh, K., Sumita, T., Kitade, Y., Morita, A., Gafur, A., … Tanaka, C. (2012). Rapid and simple preparation of mushroom DNA directly from colonies and fruiting bodies for PCR. Mycoscience, 53(5), 396-401.


Najwa, B., Slim, T., & Naïma, B. (2016). In-vitro evaluation of antagonists and fungicides in controlling citrus gummosis caused by phytophthora, phytopythium and pythium species in tunisia. British Microbiology Research Journal, 16(1), 1-14.


Nguyen, V. L. (2015). Spread of Phytophthora capsici in Black Pepper (Piper nigrum) in Vietnam. Engineering, 7, 506-513.


Perumal, M., Prabakaran, J. J., & Kamaraj, M. (2013). Isolation and characterization of potential cyanide degrading bacillus nealsonii from different industrial effluents. International Journal of ChemTech Research, 5(5), 2357-2364.


Robert, L. P., Jean, R. B., & Lee, C. C. (1995). Detection and Quantification of Phytophthora capsici in Soil. The American Phytopathology, 85(10), 1057-1063.


Shashidhara, S. (2007). Studies on foot rot of black pepper caused by Phytophthora capsici Leonian, emend, Alizedeh and Tsao. (Master’s thesis). University of Agricultural Sciences, Dharwad, Indian.


Shouan, Z., Thomas, L., White, M. C. M., John, A. M., Joseph, W. K., & Waldemar, K. (2010). Evaluation of plant growth-promoting rhizobacteria for control of Phytophthora blight on squash under greenhouse conditions. Biological Control, 53, 129-135


Ton, A. T., Ton, L. B., & Le, D. D. (2015). Khảo sát khả năng chống chịu Phytophthora capsici của một số giống tiêu trong điều kiện phòng thí nghiệm [Investigation of the resistance to Phytophthora capsici of some pepper varieties under laboratory conditions]. Retrieved May 20, 2018, from http://iasvn.org/tin-tuc/Khao-sat-kha-nang-chong-chiu-Phytophthora-capsici-cua-mot-so-giong-Ho-Tieu-trong-dieu-kien-thi-nghiem-7595.html



DOI: https://doi.org/10.46223/HCMCOUJS.tech.vi.13.1.452.2018
Creative Commons License
This work is licensed under a Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License.