--

13 (1) 2018

Ảnh hưởng của một số nhân tố ngoại sinh lên sự tăng trưởng và tích lũy lipid ở vi tảo Haematococcus Pluvialis Flotow


Tác giả - Nơi làm việc:
Nguyễn Trần Đông Phương - Trường Đại học Khoa học Tự nhiên, ĐHQG Thành phố Hồ Chí Minh, Trường Đại học Mở Thành phố Hồ Chí Minh , Việt Nam
Lê Huyền Ái Thúy - Trường Đại học Mở Thành phố Hồ Chí Minh , Việt Nam
Bùi Trang Việt - Trường Đại học Khoa học Tự nhiên, ĐHQG Thành phố Hồ Chí Minh , Việt Nam
Tác giả liên hệ, Email: Bùi Trang Việt - nguyentrandongphuong@gmail.com

Tóm tắt
Tế bào vi tảo Haematococcus pluvialis được nuôi cấy trong bình 500mL chứa 250mL môi trường lỏng BB được sục khí, theo hai giai đoạn, với mật độ tế bào ban đầu là 4,3.103 tế bào/mL. Tất cả các thí nghiệm được đặt ở nhiệt độ 25 ± 3oC, cường độ ánh sáng huỳnh quang 50µmol photon m-2s-1 và thời gian chiếu sáng 12 giờ/ngày, trừ các xử lý với ánh sáng đèn LED. Sau 7 tuần nuôi cấy trong môi trường BB (giai đoạn 1), một số nhân tố ngoại sinh gồm ánh sáng đèn LED trắng, đỏ (610 - 760 nm) và lục (460 - 490 nm) đều ở cường độ 50 µmol photon m-2s-1 (xử lý trong 3 tuần, 24 giờ, hay gián đoạn đêm 30 phút), sốc nhiệt độ (50oC trong 1,5 hay 2 giờ, 7 ± 3oC trong 2, 3, 4 hay 6 giờ, 0 ± 2oC trong 1,5 hay 2 giờ), kim loại nặng (bổ sung Cu2+, Fe2+, Mg2+, Zn2+ với nồng độ cao gấp 1,5 hay 2 lần so với môi trường BB), hoặc NaCl 0,5; 0,9 hay 3,0% được áp dụng trong giai đoạn 2 (3 tuần) để khảo sát sự tăng trưởng và tích lũy lipid ở vi tảo. Sau 10 tuần nuôi cấy, kết quả cho thấy, chỉ có xử lý ánh sáng đèn LED đỏ trong 24 giờ làm tăng lượng dầu sinh học, nhưng làm giảm trọng lượng tươi và khô so với đối chứng (ánh sáng huỳnh quang). Xử lý 7 ± 3oC trong 2 giờ làm tăng hàm lượng dầu sinh học và thay đổi không đáng kể trọng lượng tươi, nhưng giảm trọng lượng khô. Các xử lý Cu2+, Fe2+, Mg2+ và Zn2+ với nồng độ cao gấp 1,5 hay 2 lần làm giảm hoặc không tăng hàm lượng dầu sinh học. Xử lý NaCl 0,5% làm tăng hàm lượng dầu sinh học, nhưng làm giảm trọng lượng tươi và khô.

Từ khóa
haematococcus pluvialis;kim loại nặng; sốc nhiệt độ; tăng trưởng; tích lũy lipid

Toàn văn:
PDF

Tài liệu tham khảo

Bligh, E. G., & Dyer, W. J. (1959). A rapid method of total lipid extraction and purification. Canadian Journal of Biochemistry and Physiology, 37(8), 911-917. doi:10.1139/o59-099


Bui, V. T. (2016). Sinh lý thực vật đại cương [General plant physiology]. Ho Chi Minh, Vietnam: Trường Đại học Khoa học Tự nhiên, đại học Quốc Gia Thành phố Hồ Chí Minh.


Dubinsky, Z., Matsukawa, R., & Karube, I. (1995). Photobiological aspects of algal mass culture. Journal of Marine Biotechnology, 2, 61-65.


Harker, M., Tsavalos, A. J., & Young, A. J. (1996). Factors responsible for astaxanthin formation in the chlorophyte Haematococcus pluvialis. Bioresource Technology, 55(33), 207-214.


Hossain, M. I., Iwasaki, H., Okochi, Y., Chahine, M., Higashijima, S., Nagayama, K., & Okamura, Y. (2008). Enzyme domain affects the movement of the voltage sensor in ascidian and zebrafish VSPs. The Journal of biological chemistry, 283(26), 18248-18259.


Lei, A., Chen, H., Shen, G., Hu, Z., Chen, L., & Wang, J. (2012). Expression of fatty acid synthesis genes and fatty acid accumulation in Haematococcus pluvialis under different stressors. Biotechnology for Biofuels, 5(18), 2-11.


Liu, Z. Y., Wang, G. C., & Zhou, B. C. (2008). Effect of iron on growth and lipid accumulation in Chlorella vulgaris. Bioresource Technology, 99, 4717-4722.


Nguyen, P. T. D., Lao, T. D., Le, T. H. A., & Bui, V. T. (2016). Initial studies on Biotin carboxylase (BC) and acyl-acyl carrier protein thioesterase (FATA) genes in Haematococcus pluvialis Flotow. Journal of Biotechnology, 14(1A), 531-538.


Nguyen, P. T. D., Le, T. H. A., & Bui, V. T. (2015). Ảnh hưởng cùa các chất điều hòa sinh trưởng thực vật lên sự sinh trưởng của vi tảo Haematococcus pluvialis Flotow [Effect of plant growth regulators on the growth of microalgae Haematococcus pluvialis Flotow]. Tạp chí Công nghệ Sinh học, 13(2), 269-247.


Rai, L., & Mallick, N. (1993). Heavy metal toxicity to algae under synthetic microcosm. Ecotoxicology, 2, 231-242.


Sarada, R., Tripathi, U., & Ravishankar, G. A. (2002). Influence of stress on astaxanthin production in Haematococcus pluvialis grown under different culture conditions. Process Biochemitry, 37(6), 623-627.


Terry, N., & Abadía, J. (1986). Function of iron in chloroplasts. Journal of Plant Nutrition, 9(3/7), 609-646.


Wen, Z., & Johnson, M. B. (2009). Microalgae as a feedstock for biofuel production. Retrieved May 15, 2017, from https://www.pubs.ext.vt.edu/content/dam/pubs_ext_vt_edu/422/442-886/442-886_pdf.pdf


Zhila, N. O., Kalacheva, G. S., & Volova, T. G. (2011). Effect of salinity on biochemical composition of the alga Botryococcus braunii Kutz IPPAS H-252. Journal of Applied Phycology, 23(1), 47-52.



DOI: https://doi.org/10.46223/HCMCOUJS.tech.vi.13.1.451.2018
Creative Commons License
This work is licensed under a Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License.