Thu nhận cao chiết chứa polyphenol và flavonoid từ lá dứa thơm (Pandanus amaryllifolius Roxb.) bằng vi sóng và đánh giá tiềm năng kháng oxy hóa

Nguyễn Hoàng Thảo Ly; Trịnh Hữu Trúc Đào; Nghiệp Đại Ngô

doi:10.46223/HCMCOUJS.tech.vi.21.1.4289.2026

21(1)2026 (IN PRESS)

Thu nhận cao chiết chứa polyphenol và flavonoid từ lá dứa thơm (Pandanus amaryllifolius Roxb.) bằng vi sóng và đánh giá tiềm năng kháng oxy hóa

Tác giả - Nơi làm việc:

Nguyễn Hoàng Thảo Ly - Trường Đại học Nông Lâm Thành phố Hồ Chí Minh, Thành phố Hồ Chí Minh,, Việt Nam

Trịnh Hữu Trúc Đào - Trường Đại học Khoa học Tự nhiên Thành phố Hồ Chí Minh, Thành phố Hồ Chí Minh Đại học Quốc Gia Thành phố Hồ Chí Minh, Thành phố Hồ Chí Minh, Việt Nam

Nghiệp Đại Ngô - Trường Đại học Khoa học Tự nhiên Thành phố Hồ Chí Minh, Thành phố Hồ Chí Minh Đại học Quốc Gia Thành phố Hồ Chí Minh, Thành phố Hồ Chí Minh, Việt Nam

Tác giả liên hệ, Email: Nghiệp Đại Ngô - ndnghiep@hcmus.edu.vn

DOI:10.46223/HCMCOUJS.tech.vi.21.1.4289.2026

Ngày nộp: 08-04-2025
Ngày duyệt đăng: 11-06-2025
Ngày xuất bản: 14-06-2025

Tóm tắt

Nghiên cứu này sử dụng kỹ thuật chiết hỗ trợ vi sóng với dung môi nước để thu nhận cao chiết chứa các hợp chất tự nhiên từ lá dứa thơm (Pandanus amaryllifolius Roxb.). Phương pháp này giúp tăng hiệu suất chiết, tiết kiệm thời gian và giảm thiểu tác động từ dung môi hữu cơ. Các yếu tố kỹ thuật như tỷ lệ mẫu: dung môi, công suất và thời gian xử lý vi sóng được khảo sát nhằm tối ưu hóa việc thu nhận polyphenol và flavonoid từ nguyên liệu. Sau khi cô đặc, cao chiết được đánh giá khả năng khángng oxy hóa bằng hai chỉ tiêu: năng lực khử (FRAP) và hiệu suất bắt gốc tự do (DPPH). Điều kiện thích hợp bao gồm tỷ lệ nguyên liệu: dung môi là 1:50 (g/ml), công suất 440 W và thời gian chiết 2 phút. Ở điều kiện này, cao chiết chứa 102,53 mg GAE/g polyphenol và 251,18 mg RE/g flavonoid tính trên mẫu khô. Cao chiết thể hiện năng lực khử sắt với ∆OD₇₀₀ = 0,0575 (100 µg/ml) và khả năng trung hòa gốc tự do với IC₅₀ = 60,696 µg/ml trong thử nghiệm DPPH. Những phát hiện này hỗ trợ tiềm năng ứng dụng cao chiết từ lá dứa thơm như một nguyên liệu thiên nhiên có giá trị sinh học trong thực phẩm chức năng và dược phẩm.

Từ khóa

chiết xuất vi sóng; flavonoids; Pandanus amaryllifolius; polyphenols

Toàn văn:

PDF

Tài liệu tham khảo

Amjad, M. S, Talaat A. A., Md Mizanur Rahman & Yousef M. H. (2021) Determination of total flavonoid content by aluminum chloride assay: A critical evaluation. LWT-Food Science and Technology, 150, 111932, 1-11

Ana, N. A. M., Noriham, A., & Zainon, M. N. (2014). Antioxidant potential of pandan leaf extract in preventing lipid oxidation of cooked chicken breast. Journal of Food Science and Technology, 51(9), 2284–2290.

Anshu, S., Arindam, K., Geetanjali, Y., & Rintu, B. (2011). Process optimization for the extraction of polyphenols from okara. Food Technology and Biotechnology, 49(3), 322–328.

Benzie, I. F. F., & Strain, J. J. (1996). The ferric reducing ability of plasma (FRAP) as a measure of “antioxidant power”: The FRAP assay. Analytical Biochemistry, 239 (số issue), 70–76.

Blois, M. S. (1958). Antioxidant determinations by the use of a stable free radical. Nature, 181(4617), 1199–1200.

Brand-Williams, W., Cuvelier, M. E., & Berset, C. (1995). Use of a free radical method to evaluate antioxidant activity. LWT - Food Science and Technology, 28(1), 25–30.

Chan, C.-H., Yusoff, R., Ngoh, G.-C., & Kung, F. W.-L. (2009). Microwave-assisted extractions of active ingredients from plants. Journal of Chromatography A, 1216(46), 6213–6225.

Chemat, F., Abert-Vian, M., Fabiano-Tixier, A.-S., Strube, J., Uhlenbrock, L., Gunjevic, V., & Cravotto, G. (2012). Green extraction of natural products: Concept and principles. International Journal of Molecular Sciences, 13(7), 8615–8627.

Chemat, F., Rombaut, N., Meullemiestre, A., Turk, M., Perino, S., Fabiano-Tixier, A.-S., & Abert-Vian, M. (2012). Review of green food processing techniques: Preservation, transformation, and extraction. Innovative Food Science & Emerging Technologies, 13 (số issue), 1–17.

Chemat, F., Zill-e-Huma, & Khan, M. K. (2012). Applications of ultrasound in food technology: Processing, preservation and extraction. Ultrasonics Sonochemistry, 19(5), 975–983.

Eskilsson, C. S., & Björklund, E. (2000). Analytical-scale microwave-assisted extraction. Journal of Chromatography A, 902(1), 227–250.

Ghasemzadeh, A., Jaafar, H. Z. E., & Rahmat, A. (2013). Evaluation of bioactive compounds, pharmaceutical quality and antioxidant activity in different tissues of Pandanus amaryllifolius Roxb. Evidence-Based Complementary and Alternative Medicine, 2013 (số issue), 709120.

Ghasemzadeh, A., Jaafar, H. Z. E., & Rahmat, A. (2013). Variation in phytochemical, antioxidant and anticancer activity of Pandanus amaryllifolius leaf extracts prepared using different solvents. BMC Complementary and Alternative Medicine, 13 (số issue), 341.

Khoddami, A., Wilkes, M. A., & Roberts, T. H. (2013). Techniques for analysis of plant phenolic compounds. Molecules, 18(2), 2328–2375.

Nguyen, T. L., Tran, Q. T., & Nguyen, N. T. (2021). Environmental factors affecting bioactive compound content in medicinal plants: A review. Vietnam Journal of Science and Technology, 59(3A), 58–70.

Pham-Huy, L. A., He, H., & Pham-Huy, C. (2008). Free radicals, antioxidants in disease and health. International Journal of Biomedical Science, 4(2), 89–96.

Pietta, P. G. (2000). Flavonoids as antioxidants. Journal of Natural Products, 63(7), 1035–1042.

Prior, R. L., Wu, X., & Schaich, K. (2005). Standardized methods for the determination of antioxidant capacity and phenolics in foods and dietary supplements. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 53(10), 4290–4302.

Rice-Evans, C. A., Miller, N. J., & Paganga, G. (1997). Antioxidant properties of phenolic compounds. Trends in Plant Science, 2(4), 152–159.

Shalini, S., Sudhakar, M., & Selvakumar, D. (2015). Evaluation of antioxidant and antibacterial activity of Azadirachta indica leaf extract. Journal of Pharmacognosy and Phytochemistry, 4(1), 1–5.

Singleton, V. L., Orthofer, R., & Lamuela-Raventós, R. M. (1999). Analysis of total phenols and other oxidation substrates and antioxidants by means of Folin–Ciocalteu reagent. Methods in Enzymology, 299 (số issue), 152–178. https://doi.org/10.1016/S0076-6879(99)99017-1

Stalikas, C. D. (2007). Extraction, separation, and detection methods for phenolic acids and flavonoids. Journal of Separation Science, 30(18), 3268–3295.

Tiwari, B. K., Brennan, C. S., Curran, T., Gallagher, E., & Cullen, P. J. (2011). Application of ultrasound and microwave processing on polyphenols: A review. Food Research International, 44(3), 808–816.

Tiwari, B. K., Brunton, N. P., & Brennan, C. (2011). Handbook of plant food phytochemicals: Sources, stability and extraction. Wiley-Blackwell.

Vijayalakshmi, M., & Ruckmani, K. (2016). Ferric reducing antioxidant power assay in plant extract. Bangladesh Journal of Pharmacology, 11(3), 570–572.

Yen, G. C., & Duh, P. D. (1993). Antioxidative properties of methanolic extracts from peanut hulls. Journal of the American Oil Chemists’ Society, 70 (số issue), 383–386.

DOI: https://doi.org/10.46223/HCMCOUJS.tech.vi.21.1.4289.2026