--

19(1)2024

Tế bào gốc trung mô mô dây rốn người an toàn khi được ghép trên chuột C57BL/6


Tác giả - Nơi làm việc:
Phạm Nguyễn Thanh Thuỷ - Ngân hàng Tế bào gốc MekoStem, Công ty CP Hóa - Dược phẩm MekoPhar, Thành phố Hồ Chí Minh , Việt Nam
Lê Văn Đông - Viện Y học dự phòng Quân đội, Hà Nội , Việt Nam
Mai Văn Điển - Bệnh viện Đa khoa An Sinh, Thành phố Hồ Chí Minh , Việt Nam
Ngô Thị Tuyết Hạnh - Đại học Y Dược, Thành phố Hồ Chí Minh , Việt Nam
Lưu Thị Thu Thảo - Đại học Y Dược, Thành phố Hồ Chí Minh , Việt Nam
Trương Thị Thu Huyền - Ngân hàng Tế bào gốc MekoStem, Công ty CP Hóa - Dược phẩm MekoPhar, Thành phố Hồ Chí Minh , Việt Nam
Phạm Lê Bửu Trúc - Ngân hàng Tế bào gốc MekoStem, Công ty CP Hóa - Dược phẩm MekoPhar, Thành phố Hồ Chí Minh Trung tâm Công nghệ Sinh học Thành phố Hồ Chí Minh, Thành phố Hồ Chí Minh Trường Đại học Mở Thành phố Hồ Chí Minh, Thành phố Hồ Chí Minh , Việt Nam
Tác giả liên hệ, Email: Phạm Lê Bửu Trúc - buutruc@gmail.com
Ngày nộp: 04-12-2023
Ngày duyệt đăng: 05-01-2024
Ngày xuất bản: 27-03-2024

Tóm tắt
Tế bào gốc trung mô từ mô dây rốn người (human Umbilical Cord Mesenchymal Stem Cells, hUC-MSCs) thường nằm ở lớp nội mô dưới vỏ dây rốn, vùng quanh mạch máu, Wharton’s Jelly, là nguồn tế bào gốc đa tiềm năng. Đặc tính nổi bật của hUC-MSCs là khả năng điều biến miễn dịch và tính sinh miễn dịch thấp do thiếu sự hoạt động của HLA-DR và biểu hiện thấp MHC lớp I. Chúng tôi đã thực hiện phân lập, tăng sinh các tế bào gốc này trong môi trường không FBS, không kháng sinh và đánh giá tính an toàn của liệu pháp bằng cách ghép tế bào gốc trung mô này trên chuột C57BL/6. Các con chuột (n = 9) được truyền hUC-MSCs (3×105 tế bào/con) theo đường tĩnh mạch đuôi. Sau khi truyền thành công, các con chuột được theo dõi sức khỏe theo các mốc thời gian cố định. Sau 21 ngày tiêm, các bộ phận của chuột như não, tim, gan, lá lách, phổi, thận, mô nơi tiêm được thu nhận để đánh giá việc sinh u và xơ hóa mô; các mẫu máu và nước tiểu được thu nhận để đánh giá các chỉ tiêu sinh hóa và thành phần tế bào máu. Việc ghép hUC-MSCs theo đường truyền tĩnh mạch đuôi bước đầu cho thấy tính an toàn cao trên chuột, làm tiền đề cho việc ứng dụng liệu pháp trị liệu tế bào trên lâm sàng.

Từ khóa
chuột; mô dây rốn; tế bào gốc; tế bào gốc trung mô; tính an toàn

Toàn văn:
PDF

Trích dẫn:

Pham, T. N. T., Le, D. V., Mai, D. V., Ngo, H. T. T., Luu, T. T. T., Truong, H. T. T., & Pham, T. L. B. (2024). Tế bào gốc trung mô mô dây rốn người an toàn khi được ghép trên chuột C57BL/6 [Safety of human umbilical cord mesenchymal stem cells in C57BL/6 mice]. Tạp chí Khoa học Đại học Mở Thành phố Hồ Chí Minh – Kỹ thuật và Công nghệ, 19(1), 61-70. doi:10.46223/HCMCOUJS.tech.vi.19.1.3112.2024


Tài liệu tham khảo

Almeida, S. O., Skelton, R. J., Adigopula, S., & Ardehali, R. (2015). Arrhythmia in stem cell transplantation. Cardiac Electrophysiology Clinics7(2), 357-370.


Barkholt, L., Flory, E., Jekerle, V., Lucas-Samuel, S., Ahnert, P., Bisset, L., … Salmikangas, P. (2013). Risk of tumorigenicity in mesenchymal stromal cell-based therapies-bridging scientific observations and regulatory viewpoints. Cytotherapy, 15(7), 753-759.


Basu, J., Assaf, B. T., Bertram, T. A., & Rao, M. (2015). Preclinical biosafety evaluation of cell-based therapies: Emerging global paradigms. Toxicologic Pathology43(1), 115-125.


Chan, A. M. L., Ng, A. M. H., Yunus, M. H. M., Idrus, R. B. H., Law, J. X., Yazid, M. D., ... Lokanathan, Y. (2022). Safety study of allogeneic mesenchymal stem cell therapy in animal model. Regenerative Therapy19, 158-165.


Gu, L. H., Zhang, T. T., Li, Y., Yan, H. J., Qi, H., & Li, F. R. (2015). Immunogenicity of allogeneic mesenchymal stem cells transplanted via different routes in diabetic rats. Cellular & Molecular Immunology12(4), 444-455.


Liau, L. L., Al-Masawa, M. E., Koh, B., Looi, Q. H., Foo, J. B., Lee, S. H., ... Law, J. X. (2020). The potential of mesenchymal stromal cell as therapy in neonatal diseases. Frontiers in Pediatrics8, Article 591693.


Liu, G., Zhou, H., Li, Y., Li, G., Cui, L., Liu, W., & Cao, Y. (2008). Evaluation of the viability and osteogenic differentiation of cryopreserved human adipose-derived stem cells. Cryobiology57(1), 18-24.


Lukomska, B., Stanaszek, L., Zuba-Surma, E., Legosz, P., Sarzynska, S., & Drela, K. (2019). Challenges and controversies in human mesenchymal stem cell therapy. Stem Cells International2019(2), 1-10.


Musiał-Wysocka, A., Kot, M., & Majka, M. (2019). The pros and cons of mesenchymal stem cell-based therapies. Cell Transplantation28(7), 801-812.


Nagamura-Inoue, T., & He, H. (2014). Umbilical cord-derived mesenchymal stem cells: Their advantages and potential clinical utility. World Journal of Stem Cells6(2), Article 195.


Nair, A. B., & Jacob, S. (2016). A simple practice guide for dose conversion between animals and human. Journal of Basic and Clinical Pharmacy, 7(2), Article 27.


Surwit, R. S., Kuhn, C. M., Cochrane, C., McCubbin, J. A., & Feinglos, M. N. (1988). Diet-induced type II diabetes in C57BL/6J mice. Diabetes, 37(9), 1163-1167.


Zhao, J., Wang, J., Dang, J., Zhu, W., Chen, Y., Zhang, X., ... Zheng, S. G. (2019). A preclinical study - systemic evaluation of safety on mesenchymal stem cells derived from human gingiva tissue. Stem Cell Research & Therapy10(1), 1-14.



Creative Commons License
© The Author(s) 2024. This is an open access publication under CC BY NC licence.